一、介紹

高壓液相色譜（HPLC）是分析化學和生物化學中常用的一種方法，用于將混合物中的化合物進行分離，以便進一步分析和純化。

在HPLC過程中，混合物中的組分通過被泵送的溶劑（稱為流動相）穿過裝有硅基顆粒的柱子（稱為固定相）來實現(xiàn)分離。每種組分（稱為分析物）根據(jù)其在流動相和固定相之間的獨牛寺親和力，以不同的速度沿柱遷移，并在不同的時間從柱中流出，從而實現(xiàn)混合物的有效分離。

對流動相具有較高親和力的分析物會沿著柱子遷移得更快，而對固定相具有較高親和力的分析物則遷移得更慢。這種遷移時間（稱為保留時間）對于每個分析物都是獨牛寺的，可以用于其鑒定。通過在柱后適當使用檢測方法，每個分析物也可以被定量分析。

較小的柱填料顆粒尺寸可以提高色譜分辨率，但需要增加溶劑輸送壓力。進一步減小柱填料顆粒尺寸可以允許更高的溶劑流速，從而在不犧牲分辨率的情況下減少分析時間。這正是超高效液相色譜（UHPLC）相對于其他液相色譜技術的優(yōu)勢所在。

基本類型的高效液相色譜柱化學：

• 正相色譜，例如硅膠顆粒

• 反相色譜，例如涂有C-18的硅膠

基本的流動相輸送系統(tǒng)類型：

• 等度洗脫 - 使用恒定溶劑混合物，例如在整個分離過程中使用10%的水在甲醇中。

• 梯度洗脫 - 隨時間變化的溶劑混合物，例如從純己烷開始，然后逐漸增加乙酸乙酯的濃度，直到最后為純乙酸乙酯。

高效液相色譜系統(tǒng)的基本組件包括溶劑輸送泵、樣品進樣口、柱子和檢測器。高效液相色譜的性能要求儀器具有典型液相色譜系統(tǒng)所不具備的特性。溶劑輸送必須是無脈沖的，并且在1毫升/分鐘到100微升/分鐘的流量范圍內(nèi)準確校準。

注射泵通常被認為優(yōu)于活塞泵，適用于需要低且穩(wěn)定流速的高效液相色譜應用。Teledyne ISCO注射泵是這些高性能應用的優(yōu)秀高效液相色譜泵。

圖1：等度溶劑輸送系統(tǒng)

二、理論

Van Deemter方程是理解色譜法基本原理的關鍵。根據(jù)Van Deemter方程：

H = A + B/µ + Cµ

其中：H是柱子的板高，µ是流動相的線性流速。A、B和C是常數(shù)。較小的板高H表示更高的分離分辨率。²

常數(shù)A是渦流擴散項。渦流擴散是由于柱中多條流動路徑導致的，并且與流動相流速無關。由于填料顆粒的存在，分析物分子可以沿著不同長度的多條路徑前進。這些不同長度的多重路徑使分析物分子分散開來，并導致峰展寬。A項取決于固定相的緊密程度。固定相中的空隙會因通道效應導致峰展寬。相比之下，較小的填料顆粒提供更小的路徑長度差異，從而減少峰展寬。

B是縱向擴散系數(shù)。它依賴于分析物分子在流動相中的擴散系數(shù)。更快的流動相流速減少了停留時間，而分析物分子在柱中的較短停留時間減少了縱向擴散的影響。這種減少有助于提高分離效率，因為分析物分子通過擴散散開的機會更少，這解釋了1/v因子。

C是分析物質(zhì)量傳遞系數(shù)。它取決于分析物分子在移動相和固定相之間達到平衡所需的時間。如果這種平衡太慢，那么一些未能及時與固定相結(jié)合的分析物分子將會隨流動相流下柱；而那些未能及時從固定相脫離的其他分子則被留下。更高的流動相流速會導致分析物分子的擴散，因此解釋了v因子。較小的固定相顆粒預計會有更短的平衡時間。

如上所述，較小的固定相顆粒或珠子應該會降低A和C值。A項對H的貢獻較小，允許更高的分辨率。隨著C項對H值的影響變得不那么顯著，增加流動相流速不會太多犧牲分離性能。這將允許在相同的分辨率下進行更快的分離。盡管較小的柱珠可能不會直接影響B值，但較高的流速減少了其對H的貢獻。較小的柱珠將允許在更高分辨率下進行更快的分離。³

較小的珠子將以較小的間隙填充，從而減小A值，但提供更高的溶劑流動阻力。反過來，這需要更高的溶劑壓力。隨著蕞優(yōu)分離流速的增加，柱背壓隨固定相顆粒尺寸的立方成反比增加；即P∝1/d3。⁴通常，對于5 µm柱珠的HPLC需要1,000 psi的壓力，而對于1.7 µm柱珠的UHPLC則需要20,000 psi或更高的壓力。^1,4

圖2：梯度溶劑輸送系統(tǒng)

三、HPLC泵

往復式泵通常配有單活塞或雙活塞。活塞掃過的體積通常較小，約為100 µL。由于體積小，需要頻繁補充液體，導致周期性壓力下降。雙活塞泵比單活塞泵產(chǎn)生更平穩(wěn)的流動，但并非總是理想的選擇。注射泵蕞適合要求高壓、無脈沖和精確流動的高性能應用。注射泵具有更大的缸體容積，高達1 L，并且在運行期間通常不需要重新填充。因此，基線更加穩(wěn)定，沒有周期性的壓力下降。理想的泵應能夠在等度或梯度模式下操作。

表1：常用推薦的HPLC泵

四、引用

1) Y. Shen and R.D. Smith, Electrophoresis 23 (2002) pp. 3106-3124.

2) D.A. Skoog and D.M. West, Fundamentals of Analytical Chemistry, 3rd edit., pp. 643-649.

3) D. Sievers, M.E. Swartz and B.J. Murphy, G.I.T. Laboratory Journal 5(2004) pp.43-45.(2004) pp. 503-504

4) L.A. Colon, J.M. Cintron, J.A. Anspach, A.M. Fermier and K.A. Swin-ney, The Analyst 129

5) L.R. Snyder, J.J. Kirkland and J.L. Glajch, Practical HPLC Method Development, 2nd edit., pp. 41-43.

6) J.C. Giddings, Dynamics of Chromatography: Part I Principles and Theory (Marcel Dekker, Inc., New York: 1965) pp. 25-26, 229-230.

7) J.M. Cintron and L.A. Colon, The Analyst 127 (2002) pp. 701-704.A.D. Jerkovich, J.S. Mellors and J.W. Jorgenson, LCGC 21 (July 2003) pp. 600-611.